Wyklad5cyklkom-1.pdf

(1013 KB) Pobierz
Regulacja cyklu komórkowego –
część pierwsza
Cykl komórkowy – proces podziału komórki
macierzystej na dwie potomne
Zatrzymanie podziałów
i końcowe różnicowanie
lub wejście w stan spoczynku
Wykład 5
G0
Mitoza
M
Przerwa 2
(Gap 2)
Przerwa 1
(Gap 1)
G2
G1
S
Synteza DNA
Mitoza: profaza, metafaza, anafaza, telofaza
Interfaza: G1, S, G2
Organizmy modelowe do badań nad cyklem
komórkowym
Punkty kontrolne cyklu komórkowego -
checkpoints
Drożdże rozszczepkowe
Schizosaccharomycespombe
Drożdże piekarnicze
Saccharomycescerevisiae
Punkt START
Punkt restrykcyjny
G1
S
G2
M
2,5 godziny
2 godziny
Zaburzenia
ułożenia
chromosomów
Wielkość
komórki
Uszkodzenia
DNA
Zaburzona
replikacja
Uszkodzenia
DNA
Wielkość
komórki
Uszkodzenia
DNA
intra-S lub
replikacyjny
G2/M
metafaza/
anafaza
G1/S
16 godzin
807795107.051.png 807795107.056.png 807795107.057.png 807795107.058.png 807795107.001.png 807795107.002.png 807795107.003.png 807795107.004.png 807795107.005.png
Przepływ komórek i układ pomiarowy
Cytometria przepływowa
Cytometria przepływowa to metoda pomiaru
pojedynczych komórek lub cząsteczek
przepływających przez aparat w strumieniu cieczy
WIELOPARAMETROWA
ANALIZA
Parametry mierzalne za pomocą
cytometru przepływowego
STRUKTURALNE
¾ rozmiar,
¾ kształt,
¾ cytoplazmatyczna ziarnistość,
¾ zawartość barwnika np.: hemoglobina, barwniki fotosyntetyczne, porfiryny,
¾ aminokwasy fluoryzujące w białkach np.:tryptofan, tyrozyna,
¾ zawartość DNA, RNA, wszystkich białek, lipidów, cukrów powierzchniowych, antygenów
Do analizy i obrazowania danych stosuje
si ę kilka typów wykresów :
¾ jednowymiarowe (histogram),
FUNKCJONALNE
¾ ładunek powierzchniowy,
¾ ekspresja receptorów powierzchniowych,
¾ integralność błony (żywotność),
¾ aktywność endocytarna,
¾ organizacja cytoszkieletu,
¾ aktywność enzymów
¾ dwuwymiarowe (kropkowy)
807795107.006.png 807795107.007.png 807795107.008.png
WYKRES DWUWYMIAROWY
(KROPKOWY)
Histogram DNA
G 0 -G 1
G 2 -M
G 0 -G 1
G 2 -M
komórki martwe
PI – jodek propidyny
– barwi DNA martwych
komórek
Aneksyna- FITC
(fluoresceina) –łączy się
z fosfatydyloseryną
obecną w na zewnątrz
błony komórek
apoptotycznych
PI
S
aneksyna V-FITC
FL1-H
intensywność fluorescencji
komórki apoptotyczne
komórki żywe
Decyzja o
podziale
Replikacja
genomu
Tworzenie
wrzeciona
Segregacja
chromosomów
Koniec
mitozy
Decyzja o
podziale
G1
G1
G2
S
G1
S
G2
M
G1
G2
S
G1
1N 2N
1N 2N
1N 2N
1N 2N
1N 2N
1N 2N
807795107.009.png 807795107.010.png 807795107.011.png 807795107.012.png 807795107.013.png 807795107.014.png 807795107.015.png 807795107.016.png 807795107.017.png 807795107.018.png 807795107.019.png 807795107.020.png 807795107.021.png 807795107.022.png 807795107.023.png 807795107.024.png 807795107.025.png 807795107.026.png 807795107.027.png 807795107.028.png 807795107.029.png 807795107.030.png 807795107.031.png 807795107.032.png 807795107.033.png 807795107.034.png 807795107.035.png 807795107.036.png 807795107.037.png 807795107.038.png 807795107.039.png 807795107.040.png
Pierwsze dowody na regulację cyklu
komórkowego
Sposoby na synchronizacje komórek w
jednej fazie cyklu komórkowego
Klasyczny eksperyment fuzji jąder wykonanych
przez Rao i Johnsona na przełomie lat 60/70
Faza G1: feromon alfa (u S. cerevisiae)
lub głodzenie (u S. pombe)
Wniosek: jądro w fazie S uwalnia
jakiś czynnik, który indukuje przejście
jądra G1 do fazy S
Wniosek: jądro w fazie G2 jest odporne
na czynnik promujący fazę S (S-phase
Promoting Factor: SPF)
Wniosek: jądra w fazie G1 i G2 nie
wpływają na siebie
Wniosek: jądra w fazie mitozy uwalnia
czynnik promujący mitozę (Maturation
Promoting Factor: MPF), który indukuje
mitozę we wszystkich jądrach interfazowych
Faza S: hydroksymocznik, zahamowanie
produkcji dNTP, co prowadzi do
zatrzymania replikacji
Faza G2/M: nokodazol,
depolimeryzacja mikrotubul, co
prowadzi do rozpadu wrzeciona
Pierwsze dowody na regulację cyklu
komórkowego
Nobel 2001 z fizjologii i medycyny
za odkrycie mechanizmów
regulacji cyklu komórkowego
1. Aktywność MPF zmienia się
w trakcie cyklu komórkowego
2. MPF ma aktywność kinazy
3. MPF zawiera dwie podjednostki
1. Ilość cyklin zmienia się
w trakcie cyklu komórkowego
Izolacja mutantów cdc(celldivision
control) u S. cerevisiae,które miały
zablokowany cykl komórkowy;
zajmował się regulacją punktu kontrolnego
G1/S; odkrywca kinazy Cdc28; wprowadził
pojęcie „checkpoint” i „start” dla określenia
przejścia z fazy G1 do S; lata 70-te
Odkrywca cyklin regulujący
aktywność kinaz Cdc; cykliny
zaobserwowano po raz pierwszy
w oocytach jeżowca Arbacia;
lata 80-te
Izolacja mutantów cdcu S. pombe,
które przyspieszały cykl komórkowy;
badał regulację przejścia z fazy G2 do
mitozy; odkrywca kinazy cdc2;
lata 70-te
Cdc28 + Clb1,2
(Cdk1)
SPF = cyclin D + Cdk4 kinase
Cdc28 + Cln1,2
807795107.041.png 807795107.042.png 807795107.043.png 807795107.044.png 807795107.045.png 807795107.046.png 807795107.047.png 807795107.048.png 807795107.049.png
U ssaków poszczególne etapy cyklu
komórkowego są regulowane przez cztery różne
kinazy zależne od cyklin
(Cdk – Cyclin-dependent kinase)
Czynnikami indukującymi fazę S
(SPF) oraz czynnikami promującymi
mitozę (MPF) u wszystkich badanych
organizmów okazały się być
pochodzące z jednej rodziny białka,
które nazwano Cdk
(cyclin-dependent kinase - kinazy
zależne od cyklin)
Cyclin D
CDK4,6
U drożdży występuje 5 kinaz zależnych od
cyklin, ale tylko jedna Cdc28/Cdk1
reguluje cały cykl komórkowy
U drożdży Cdc28 (Cdk1) reguluje cały cykl komórkowy,
ale łączy się z 9-cioma różnymi cyklinami pojawiającymi
się okresowo w różnych fazach cyklu
Cdc28 (9 cyklin): regulacja wszystkich etapów cyklu
komórkowego
Pho85 (10 cyklin): odpowiedź na zmiany środowiska,
stres; regulacja cyklu komórkowego
Kin28 (Ccl1): regulacja transkrypcji
Ssn3 (Ssn8): regulacja transkrypcji
807795107.050.png 807795107.052.png 807795107.053.png 807795107.054.png 807795107.055.png
Zgłoś jeśli naruszono regulamin