sprawozdanie-Malgosia Pac(1).doc

(336 KB) Pobierz
Badania immunologiczne

Badania immunologiczne

 

              Zgodnie z założeniami projektu dokonano oceny następujących parametrów immunologicznych u dzieci z XLA i CVID:

a)                              charakterystykę fenotypu limfocytów i monocytów krwi obwodowej,

b)                              zdolność limfocytów T krwi obwodowej do proliferacji (po stymulacji  przeciwcialami anty-CD3 i PHA)

c)                              poziom syntezy cytokin w hodowlach limfocytów indukowanych przeciwciałami anty-CD3.

 

Badania fenotypu limfocytów obejmowały określenie ekspresji następujących receptorów błonowych:

1)                              limfocytów T (CD3, CD4, CD8, CD28), komórek NK (CD56) oraz  limfocytów B (CD19),

2)                              izoform powszechnego antygenu leukocytarnego (CD45Ag), tj. CD45RA, CD45RO oraz CD45RB w populacjach limfocytów T CD4+ oraz T CD8+ ,

3)                              koekspresji receptora CD27 z izoformami CD45RA i CD45RO w populacjach komórek T CD4+ i CD8+

4)                              koekspresji receptora CD27 i CD28 w populacjach  limfocytów T CD4+ i CD8+    

Badania fenotypu monocytów krwi obwodowej obejmowały ocenę ekspresji niektórych receptorów o funkcji kostymulacyjnej oraz efektorowej i dotyczyły receptorów CD11a, CD86, HLA-DR, CD54, CD14 oraz CD16.

 

Ekspresję receptorów błonowych limfocytów i monocytów określano techniką cytometrii przepływowej przy użyciu cytometru firmy Coulter, typu EPICS XL-MCL oraz (w niektórych badaniach), a  także cytometru typu FASC-scan firmy Becton-Dickinson.  Określano % komórek pozytywnych dla każdego markera błonowego oraz intensywność fluorescencji  (FI), mierzoną jako tzw „mean channnel number”.

Barwień przy użyciu swoistych przeciwciał monoklonalnych (sprzężonych z fluoresceiną-FITC fikoerytryną –PE oraz PerCp dokonywano w populacji jednojądrzastych komórek krwi obwodowej (PBMC) izolowanych na gradiencie gęstości (Lymphoprep, Nycomed, Oslo, Norwegia) wg. procedur uprzednio opisanych i opublikowanych (1-4).

Test proliferacji limfocytów przy użyciu przeciwciał anty-CD3 (Sigma) oraz PHA (Sigma) przeprowadzano w trzydniowych hodowlach, w mikropłytkach hodowlanych, w medium hodowlanym (RPMi-1640 + 5% inaktywowanej surowicy ludzkiej).  Wyniki podano w imp/mi (4,5).

Poziom syntezy cytokin (IFN-gamma, TNF-alfa, IL-10, IL-12, IL-6 oraz IL-13) określano po 48 godzinach aktywacji PBMC ( 1 x 106 /ml) z przeciwciałami anty-CD3 (100 ng/ml). Po zakończeniu inkubacji komórki wirowano, supernatant zachowywano i określano poziom cytokin technika immunoenzymatyczną ELISA, przy uzyciu fabrycznie przygotowanych zestawów (firmy Becton-Dickinson), wg. procedur uprzednio opisanych (6).

II a Omówienie wyników

Wyniki badań immunologicznych przedstawiono w tabelach od 1-12. Generalnie wskazują one zaburzenia zarówno w zakresie ekspresji markerów błonowych limfocytów  i monocytów jak i defekt w zakresie  niektórych parametrów czynnościowych, szczególnie u chorych z CVID.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Tabela  1. Charakterystyka fenotypowa podstawowych subpopulacji limfocytów u dzieci z  CVID oraz XLA

Lymphocyte types

Control (C)

n=45

CVID (A)

n=19/20

XLA (B)

n=11

Lymphocytes

% median [–95%CI¸+95%CI]

 

46,00 a [42,6÷48,3]

 

40,00 a [33,3÷44,4] ¯

 

34,00 [27,5÷47,6]

 

Abs. Cell count/mm3

Median [–95%CI¸+95%CI]

 

3219,00 a

[3185,1÷37772,9]

 

2085,00 a

[1774,8÷2519,2]¯

 

3094,00

[2041,6÷4226,4]

CD3+

% median [–95%CI¸+95%CI]

 

 

77,00 b [75,1÷78,6]

 

76,00 c [72,5÷80,5]

 

88,00 b,c [82,6÷91,3]­

FI median [–95%CI¸+95%CI]

 

23,60 a [20,6÷23,6]

16,85 a [14,3÷18,9]¯

20,50 [14,2÷25,1]

Abs. Cell count/mm3

Median [–95%CI¸+95%CI]

 

2898,01 a

[2469,1÷2898,0]

1676,00 a,c

[1346,3÷2264,4]¯

2937,00 c

[2056,0÷3699,2]­

CD4+

% median [–95%CI¸+95%CI]

 

 

47,00 a [46,1÷50,0]

 

39,00 a,c [36,4÷46,6]¯

 

46,00 c [44,5÷55,1]

FI median [–95%CI¸+95%CI]

 

32,10 a,b [31,4÷34,7]

21,10 a [17,4÷23,6]¯

20,70 b [17,2÷28,0]¯

Abs. Cell count/mm3

Median [–95%CI¸+95%CI]

 

1860,78 a

[1527,3÷1860,8]

836,00 a,c

[708,2÷1202,5]¯

1730,00 c

[1040,9÷1942,8]

CD8+

% median [–95%CI¸+95%CI]

 

 

27,00 b [25,9÷28,7]

 

29,00 [24,0÷34,9]

 

30,00 b [27,3÷38,7]­

FI median [–95%CI¸+95%CI]

 

42,30 a,b [40,1÷44,8]

60,8 a [40,1÷63,8]­

60,10 b [47,4÷67,1]­

Abs. Cell count/mm3

Median [–95%CI¸+95%CI]

 

905,00 a

[851,0÷971,6]

591,00 a

[485,9÷936,4]¯

1036,00

[699,4÷1498,1]

CD4/CD8 ratio

median [–95%CI¸+95%CI]

 

 

1,7 [1,7÷2,0]

 

1,4 [1,1÷2,6]

 

1,5 [1,0÷2,4]

CD19+

% median [–95%CI¸+95%CI]

 

13,00 b [9,6÷14,3]

 

15,50 c [11,2÷19,1]

 

_ b,c

FI median [–95%CI¸+95%CI]

 

5,30 a,b [3,9÷5,6]

6,60 a,c [5,6÷7,4]

_ b,c

Abs. cell count/mm3

median [–95%CI¸+95%CI]

278,00 b

[262,4÷386,7]

322,00 c

[226,6÷512,5]

_ b,c

CD56+

% median [–95%CI¸+95%CI]

 

...
Zgłoś jeśli naruszono regulamin